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Retsevmo® Selpercatinib

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Testmethoden zur Diagnose von RET-Veränderungen bei der Behandlung mit Retsevmo® (Selpercatinib).

Es gibt verschiedene empfohlene Methoden für RET-Tests. Die Richtlinien für RET-Tests variieren je nach Tumortyp.

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AT_DE_cFAQ_SEL105_RET_TESTINGde

RET-veränderte Krebsarten

Der Begriff "Rearranged during transfection" (RET) - veränderte Krebsarten umfasst zwei Gruppen von genetischen Veränderungen, darunter RET-Fusionen und RET-Mutationen.1,2

Diese Veränderungen aktivieren nachgeordnete RET-Signalwege, die die Zellproliferation und das Überleben von Zellen bei Krebs fördern.1

Molekulare Tumortests

Frühe umfassende genomische Tests wurden mit verbesserten Patientenergebnissen in Verbindung gebracht, einschließlich eines verbesserten Gesamtüberlebens.3-5 Umgekehrt können sich Einzelgentests aufgrund der begrenzten Verfügbarkeit von Gewebe und der Bandbreite der Mutationen, die ursprünglich nicht ausgewertet wurden, negativ auf zukünftige umfassende Gentests auswirken..5

Molekulare Tumortests werden durchgeführt, um

  • Erleichterung der Diagnose durch Identifizierung von Tumormerkmalen
  • prädiktive und prognostische Biomarker zu identifizieren, die bei der Betrachtung möglicher klinischer Ergebnisse verwendet werden können
  • Identifizierung geeigneter
    • Patienten für klinische Studien und
    • zielgerichtete oder systemische Therapien.6

Durch molekulare Tests können auch handlungsrelevante Mutationen identifiziert werden, definiert als Mutationen, auf die ein aktuelles Arzneimittel oder ein Prüfpräparat direkt oder indirekt abzielt.7

Die Sequenzierung der nächsten Generation (Next -generation sequencing) (NGS) ist eine umfassende Testmethode, mit der DNA und/oder RNA zum Nachweis von RET analysiert werden.8 Diese Methode ermöglicht Multiplex-Tests an einer kleinen Gewebemenge und den Nachweis sowohl häufiger als auch seltener krebsbezogener Biomarker.9 Die NGS-Plattform

  • ermöglicht den genauen und sensitiven Nachweis von Genfusionen, Mutationen und Amplifikationen
  • ermöglicht die potenzielle Identifizierung von RET-Fusionen als In-Frame-Ereignisse und
  • den Nachweis von vorgelagerten Partnern und gleichzeitigen genomischen Veränderungen, an denen andere Gene als RET beteiligt sind.1,8-10

Die Sequenzierung der nächsten Generation eignet sich für formalinfixierte, in Paraffin eingebettete Proben und kann zur Analyse flüssiger Biopsieproben angepasst werden.8

Obwohl dies für den Patienten invasiver ist, werden Gewebetests bevorzugt, weil

  • es möglich ist, dass eine RET-Veränderung, die durch eine Biopsie festgestellt wird, möglicherweise nicht durch eine flüssige Biopsie im Blut gefunden werden kann.
  • bis zu 30 % der RET-Veränderungen übersehen werden können, wenn nur zirkulierende Tumor-DNA (circulating tumor DNA) (ctDNA) getestet wird.11,12

Neben NGS werden verschiedene Testmethoden zur Diagnose von RET-Mutationen eingesetzt. RET-Testmethodebietet einen Überblick über RET-Testmethoden, die in absteigender Reihenfolge der Akzeptanz aufgeführt sind. 

RET-Testmethode

Testmethodea

Beschreibung

Vorteil

Nachteil

Geeignet für RET-Tests

Zeit, die benötigt wird, um den Test abzuschließen

NGS1,9,13,14

  • Ermöglicht Multiplex-Tests an einer kleinen Menge Gewebe
  • Erkennt seltene und häufige krebsbezogene Biomarker 
  • Hochempfindlich und spezifisch
  • Gleichzeitige Abfrage nach potenziell handlungsrelevanten Zielen
  • Erkennt bekannte und neuartige Fusionen
  • Kein standardisiertes Modell oder keine Richtlinien bezüglich NGS in der klinischen Praxis
  • Kann niederfrequente Varianten mit unbekannter Interpretation der Signifikanz identifizieren

Ja

2–4 Wochen

DNA-basierte NGS9,15-17

 

RET-Identifikation/
Mutationsinformation

Schlechte Abdeckung einiger Intron-Bereiche

Ja


RNA-basierte NGS8,9,18,19

 

Unvoreingenommene Fusionsinformationen; keine Probleme mit der Intron-Abdeckung

Beeinflusst von der Qualität der RNA

Ja


RT-PCR10,14,20-24

Verwendet RNA aus Gewebe zur Herstellung von cDNA und verwendet separate Sonden für jeden 5'-Partner

  • Schnell
  • Relativ kostengünstig
  • Speziell für die Identifizierung bekannter RET-Fusionspartner, erkennt keine neuartigen RET-Umlagerungen

PCR sind für die vorherrschenden Fusionen ausgelegt und die tatsächliche Häufigkeit von RET-Fusionen wird unterschätzt. 

Ja

1–2 Tage

FISH8,10,14,25-30

Lokalisiert die Positionen spezifischer DNA-Sequenzen auf Chromosomen 

Hochempfindlicher, definitiver Standard zur Erkennung einer RET-Umlagerung, unabhängig vom Fusionspartner

  • Fehlende Standardgrenzwerte für die Definition von positiven Ergebnissen hinsichtlich RET-Fusionen führen zu einer schlechten Spezifität.
  • Hohe FP/FN-Rate
  • Mutationsinformationen können nicht erkannt werden

Seltene Fälle

2–3 Tage

IHC8,10,31-33

Verwendet Antikörper, um Gewebeantigene zu finden, die bei bestimmten Krebsarten exprimiert werden

Allgemein verfügbar

  • Unzuverlässig beim Erkennen von RET-Umlagerungen
  • Geringe Empfindlichkeit
  • Variable Spezifität
  • Signifikante FP/FN

Nein

2 Tage

Abkürzungen: cDNA = komplementäre Desoxyribonukleinsäure (complementary deoxyribonucleic acid); FISH = Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung; FN = falsch negativ; FP = falsch positiv; IHC = Immunhistochemie; NGS = Sequenzierung der nächsten Generation (next-generation sequencing); PCR = Polymerasekettenreaktion (polymerase chain reaction); RET = während der Transfektion neu geordnet (rearranged during transfection); RT = reverse Transkription.

aIn absteigender Reihenfolge der Annehmbarkeit aufgeführt.

Klinische Richtlinien für Tests

Gemäß einer kürzlich veröffentlichten Leitlinie der Europäischen Gesellschaft für Medizinische Onkologie (ESMO) (European Society for Medical Oncology) sollten Patienten, die von nicht-kleinzelligem Lungenkrebs (NSCLC) (non-small cell lung cancer), nicht-medullärem Schilddrüsenkrebs (MTC) (non-medullary thyroid cancer) oder anderen soliden Tumoren betroffen sind, mit verfügbaren formalinfixierten, paraffineingebetteten (FFPE)  (formalin-fixed parafin-embedded) Proben auf den Nachweis einer RET-Fusion untersucht werden.

Wenn NGS nicht verfügbar ist, ist eine Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung (FISH) (fluorescence in situ hybridization) oder eine reverse Transkriptions-Polymerase-Kettenreaktion (RT-PCR) (reverse transcription- polymerase chain reaction) bei NSCLC und Nicht-MTC indiziert, abhängig von der lokalen Verfügbarkeit, den Kosten und/oder der Menge der Tumorzellen.34

Nicht-kleinzelliges Lungenkarzinom

  • Die ESMO-Arbeitsgruppe für Präzisionsmedizin empfiehlt, dass eine Tumorprobe (oder Plasmaprobe) eines Patienten mit fortgeschrittenem nicht-plattenepithelialem NSCLC mit Hilfe der NGS-Technologie profiliert wird, um Veränderungen der Stufe 1 zu erkennen. In Anbetracht der hohen Frequenz von Fusionen sind RNA-basierte NGS oder DNA-basierte NGS, die solche Fusionen einfangen sollen, die bevorzugten Optionen.35

Im Allgemeinen empfehlen, der International Association for the Study of Lung Cancer (IASLC), College of American Pathologists (CAP) und Association for Molecular Pathology (AMP), Patienten mit Adenokarzinom auf epidermaler Wachstumsfaktor-Rezeptor (EGFR) (epidermal growth factor receptor), anaplastische Lymphomkinase (ALK) und ROS1-Varianten zu testen. Es wird auch empfohlen, B-schnell beschleunigtes Fibrosarkom (BRAF) (B-rapidly accelerated fibrosarcoma) im Rahmen eines breiteren Panels durchzuführen.20,21

Eine Übersicht über die klinischen Richtlinien für RET-Tests bei Lungenkrebs finden Sie in Klinische Richtlinien für RET-Tests bei Lungenkrebs .

Klinische Richtlinien für RET-Tests bei Lungenkrebs 

 

IASLC/CAP/AMP20,21

ESMO35

NCCN®36a

RET tests

Ein Test sollte in Erwägung gezogen werden.

Nicht als routinemäßiger eigenständiger Test empfohlen. Geeignet als Teil eines größeren Panels, entweder anfangs oder wenn negativ für EGFR, ALK und ROS1

RET-Fusionen gelten als Level-1C-Veränderungen und ein Screening auf Level-1-Veränderungen wird empfohlen.

Empfehlung der Kategorie 2A im Rahmen des routinemäßigen Biomarker-Screenings.bc

Andere Empfehlungen 

Breite Multiplex/NGS-Panels, die gegenüber Einzelgentests bevorzugt werden, um ein breiteres Spektrum an umsetzbaren Veränderungen zu identifizieren

In Anbetracht der hohen Frequenz von Fusionen sind RNA-basierte NGS oder DNA-basierte NGS, die solche Fusionen einfangen sollen, die bevorzugten Optionen.

NGS-basierte Methoden weisen eine hohe Spezifität auf, und RNA-basiertes NGS ist DNA-basiertem NGS für den Fusionsnachweis vorzuziehen. FISH und RT-PCR können auch zum Nachweis von RET-Rearrangements verwendet werden.b

Abkürzungen: ALK = anaplastische Lymphom-Kinase (anaplastic lymphoma kinase); AMP = Association for Molecular Pathology; CAP = College of American Pathologists; EGFR = epidermaler Wachstumsfaktor-Rezeptor (epidermal growth factor receptor); ESMO = European Society for Medical Oncology; FISH = fluorescence in situ hybridization; IASLC = International Association for the Study of Lung Cancer; NCCN = National Comprehensive Cancer Network; NGS = Sequenzierung der nächsten Generation (next generation sequencing); RET = während der Transfektion neu geordnet (rearranged during transfection); RT-PCR = reverse-transcription polymerase chain reaction. 

aNCCN® gibt keinerlei Garantien in Bezug auf deren Inhalt, Nutzung oder Anwendung und lehnt jegliche Verantwortung für deren Anwendung oder Nutzung in irgendeiner Weise ab.

bDie NCCN®-Richtlinien für NSCLC enthalten Empfehlungen für einzelne Biomarker, die getestet werden sollten, und empfehlen Testtechniken, unterstützen jedoch keine spezifischen kommerziell erhältlichen Biomarker-Assays.

cKategorie 2A: Auf der Grundlage von Beweisen auf niedrigerer Ebene besteht ein einheitlicher NCCN-Konsens darüber, dass die Behandlung angemessen ist.

Schilddrüsenkrebs

Medulläres Schilddrüsenkarzinom ist eine Untergruppe von ungefähr 1 % bis 2 % aller Fälle von Schilddrüsenkrebs.37 Ungefähr 75 % der MTC-Fälle sind sporadisch und 25 % sind hereditär.37 Molekulare Tests können somatische MTC als Multiple endokrine Neoplasie (MEN) 2A (einschließlich assoziierter konjugierter Linolsäure oder Hirschsprung-Krankheit) oder MEN2B klassifizieren. Die Richtlinien variieren je nach Klassifizierung der somatischen MTC.38

Molekulare Tests können auch das Vorhandensein von RET bestimmen. Die meisten Patienten mit MEN2A oder MEN2B und familiärem MTC haben RET-Keimbahnmutationen und ungefähr 50 % der Patienten mit sporadischem MTC haben somatische RET-Mutationen.38

Ungefähr 15 % bis 30 % der Schilddrüsenknoten werden zum Zeitpunkt der Diagnose von Feinnadel-Aspiration (FNA) als zytologisch unbestimmt eingestuft. Es wurden molekulare Tests entwickelt, um die Diagnose und die angemessene Behandlung dieser Läsionen zu erleichtern und um

  • unnötige Operationen bei gutartigen Schilddrüsenknoten zu vermeiden
  • Krebserkrankungen mit hohem Risiko für eine mögliche totale Thyreoidektomie zu identifizieren und
  • prämaligne Knötchen mit geringem bis mittlerem Risiko für eine mögliche Lobektomie zu identifizieren.39

Eine Übersicht über die Testrichtlinien für RET-Tests bei Schilddrüsenkrebs finden Sie in Klinische Richtlinien für RET-Tests bei Schilddrüsenkarzinom.

Klinische Richtlinien für RET-Tests bei Schilddrüsenkarzinom

 

ATA40
(bei Diagnose)

ATA38
(Somatische Untersuchung des Tumors für Prognose- und Behandlungsentscheidungen)

ESMO 34,41

NCCN® 42ab

RET-Tests

Bei Verdacht auf Zytologie mit einem 7-Gen-Mutationspanel sollten Tests in Erwägung gezogen werden.

Tests für:

  • MTC
  • sporadisches MTC
  • Verwandte 1. Grades von Patienten mit MTC
  • Patienten mit CLA
  • Eltern von Säuglingen mit klassischem MEN2B-Phänotyp
  • Säuglinge/Kinder mit HD und Exon 10-RET-Keimbahnmutationen
  • Erwachsene mit MEN2A- und Exon 10-Mutationen mit Symptomen von HD

Molekulare Tests, einschließlich RET für Schilddrüsenknoten

Tests für:

  • MTC mit FNA oder nach einer Schilddrüsenoperation
  • lokal rezidivierende fortgeschrittene und/oder metastatische Erkrankungen, die für eine RAI-Therapie nicht zugänglich sind
  • neu diagnostiziertes sporadisches MTC
  • Keimbahn-WT oder unbekannt mit rezidivierendem oder anhaltendem MTC
  • Keimbahnmutationc
  • MEN2A MTC
  • MEN2B MTC
  • Familienmitglieder 

Andere Empfehlungen

NA

Eltern, die keine pränatalen RET-Tests wünschen, sollte eine genetische Beratung angeboten werden.

NA

Tests in unbestimmten FNA-Proben sollten in Erwägung gezogen werden.

Abkürzungen: ATA = American Thyroid Association; BRAF = B-schnell beschleunigtes Fibrosarkom (B-rapidly accelerated fibrosarcoma); CLA = konjugierte Linolsäure (conjugated linoleic acid); ESMO = European Society for Medical Oncology; FFPE = formalinfixiertes Paraffin eingebettet (formalin-fixed paraffin-embedded); FNA = Feinnadelaspiration; HD = Hirschsprung-Krankheit (Hirschsprung’s Disease); MEN = multiple endokrine Neoplasie; MTC = medulläres Karzinom der Schilddrüse (medullary thyroid carcinoma); NCCN = National Comprehensive Cancer Network; NGS = next-generation sequencing; Q-PCR = quantitative real-time polymerase chain reaction; RAI = radioaktives Jod (radioactive iodine); RET = während der Transfektion neu geordnet (rearranged during transfection); SUSP =malignitätsverdächtig (suspicious for malignancy); WT = Wildtyp. 

aMolekulare Marker sollten mit Vorsicht und im Zusammenhang mit klinischen, radiologischen und zytologischen Merkmalen jedes einzelnen Patienten interpretiert werden.

bDas NCCN® übernimmt keinerlei Gewährleistungen in Bezug auf Inhalt, Verwendung oder Anwendung und lehnt jegliche Verantwortung für deren Anwendung oder Verwendung in jeglicher Weise ab.

cEs sollten spezifische Mutationstests und eine genetische Beratung von Familienmitgliedern durchgeführt werden.

Referenzen

1Drilon A, Hu ZI, Lai GGY, Tan DSW. Targeting RET-driven cancers: lessons from evolving preclinical and clinical landscapes. Nat Rev Clin Oncol. 2018;15(3):151-167. https://doi.org/10.1038/nrclinonc.2017.175

2Mulligan LM. RET revisited: expanding the oncogenic portfolio. Nat Rev Cancer. 2014;14(3):173-186. https://doi.org/10.1038/nrc3680

3Scott JA, Katzen HI, Lennerz JK, et al. Real world testing and treatment patterns among patients with stage IV NSCLC: a retrospective observational study. J Clin Oncol.2023;41(16_suppl):9030-9030. https://ascopubs.org/doi/abs/10.1200/JCO.2023.41.16_suppl.9030?afgooR

4Levy BP, Nguyen D, ShihY-H, et al. Association between real-world, upfront next generation sequencing and overall survival (OS) in advanced non-small cell lung cancer (aNSCLC). J Clin Oncol.2023;41(16_suppl):9117-9117. https://ascopubs.org/doi/abs/10.1200/JCO.2023.41.16_suppl.9117

5Nesline MK, DePietro P, Cooper M, et al. The impact of single gene testing (SGT) on subsequent comprehensive genomic profiling (CGP) success in community oncology practice for advanced non-small cell lung cancer (NSCLC). J Clin Oncol.2023;41(16_suppl):6506-6506. https://ascopubs.org/doi/abs/10.1200/JCO.2023.41.16_suppl.6506

6Normanno N, Denis MG, Thress KS, et al. Guide to detecting epidermal growth factor receptor (EGFR) mutations in ctDNA of patients with advanced non-small-cell lung cancer. Oncotarget. 2017;8(7):12501-12516. https://doi.org/10.18632/oncotarget.13915

7Meric-Bernstam F, Johnson A, Holla V, et al. A decision support framework for genomically informed investigational cancer therapy. JNCI. 2015;107(7). https://doi.org/10.1093/jnci/djv098

8Garinet S, Laurent-Puig P, Blons H, Oudart JB. Current and future molecular testing in NSCLC, what can we expect from new sequencing technologies? J Clin Med. 2018;7(6):144. https://doi.org/10.3390/jcm7060144

9Drilon A, Wang L, Arcila ME, et al. Broad, hybrid capture-based next-generation sequencing identifies actionable genomic alterations in lung adenocarcinomas otherwise negative for such alterations by other genomic testing approaches. Clin Cancer Res. 2015;21(16):3631-3639. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-14-2683

10Ferrara R, Auger N, Auclin E, Besse B. Clinical and translational implications of RET rearrangements in non–small cell lung cancer. J Thorac Oncol. 2018;13(1):27-45. https://doi.org/10.1016/j.jtho.2017.10.021

11Hou H, Yang X, Zhang J, et al. Discovery of targetable genetic alterations in advanced non-small cell lung cancer using a next-generation sequencing-based circulating tumor DNA assay. Sci Rep. 2017;7(1):14605. https://doi.org/10.1038/s41598-017-14962-0

12Villaflor V, Won B, Nagy R, et al. Biopsy-free circulating tumor DNA assay identifies actionable mutations in lung cancer. Oncotarget. 2016;7(41):66880-66891. https://doi.org/10.18632/oncotarget.11801

13Khoo C, Rogers TM, Fellowes A, et al. Molecular methods for somatic mutation testing in lung adenocarcinoma: EGFR and beyond. Transl Lung Cancer Res. 2015;4(2):126-141. https://doi.org/10.3978/j.issn.2218-6751.2015.01.10

14Vnencak-Jones CL, Berger MF, Pao W. Types of molecular tumor testing. My Cancer Genome. 2020. Updated February 3, 2020. Accessed February 12, 2020. https://www.mycancergenome.org/content/molecular-medicine/types-of-molecular-tumor-testing/

15Yu Y, Dong L, Li D, et al. Targeted DNA sequencing detects mutations related to susceptibility among familial non-medullary thyroid cancer. Sci Rep. 2015;5(1):16129. https://doi.org/10.1038/srep16129

16Davies KD, Le AT, Sheren J, et al. Comparison of molecular testing modalities for detection of ROS1 rearrangements in a cohort of positive patient samples. J Thorac Oncol. 2018;13(10):1474-1482. https://doi.org/10.1016/j.jtho.2018.05.041

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18Vaughn CP, Costa JL, Feilotter HE, et al. Simultaneous detection of lung fusions using a multiplex RT-PCR next generation sequencing-based approach: a multi-institutional research study. BMC Cancer. 2018;18(1):828. https://doi.org/10.1186/s12885-018-4736-4

19Yang SR, Aypar U, Rosen EY, et al. Performance comparison of commonly used assays to detect RET fusions. Clin Cancer Res. 2020;27(5):1316-1328. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-20-3208

20Lindeman NI, Cagle PT, Aisner DL, et al. Updated molecular testing guideline for the selection of lung cancer patients for treatment with targeted tyrosine kinase inhibitors: guideline from the College of American Pathologists, the International Association for the Study of Lung Cancer, and the Association for Molecular Pathology. J Thorac Oncol. 2018;13(3):323-358. https://doi.org/10.1016/j.jtho.2017.12.001

21Lindeman NI, Cagle PT, Aisner DL, et al. Updated molecular testing guideline for the selection of lung cancer patients for treatment with targeted tyrosine kinase inhibitors: guideline from the College of American Pathologists, the International Association for the Study of Lung Cancer, and the Association for Molecular Pathology. Arch Pathol Lab Med. 2018;142(3):321-346. https://doi.org/10.5858/arpa.2017-0388-CP

22Zhang T, Lu Y, Ye Q, et al. An evaluation and recommendation of the optimal methodologies to detect RET gene rearrangements in papillary thyroid carcinoma. Genes Chromosomes Cancer. 2015;54(3):168-176. https://doi.org/10.1002/gcc.22229

23Caria P, Dettori T, Frau DV, et al. Assessing RET/PTC in thyroid nodule fine-needle aspirates: the FISH point of view. Endocr Relat Cancer. 2013;20(4):527-536. https://doi.org/10.1530/ERC-13-0157

24Colato C, Vicentini C, Cantara S, et al. Break-apart interphase fluorescence in situ hybridization assay in papillary thyroid carcinoma: on the road to optimizing the cut-off level for RET/PTC rearrangements. Eur J Endocrinol. 2015;172(5):571-582. https://doi.org/10.1530/EJE-14-0930

25Chen F, Clark DP, Hawkins AL, et al. A break-apart fluorescence in situ hybridization assay for detecting RET translocations in papillary thyroid carcinoma. Cancer Genet Cytogenet. 2007;178(2):128-134. https://doi.org/10.1016/j.cancergencyto.2007.07.006

26Go H, Jung YJ, Kang HW, et al. Diagnostic method for the detection of KIF5B-RET transformation in lung adenocarcinoma. Lung Cancer. 2013;82(1):44-50. https://doi.org/10.1016/j.lungcan.2013.07.009

27Lee SE, Lee B, Hong M, et al. Comprehensive analysis of RET and ROS1 rearrangement in lung adenocarcinoma. Mod Pathol. 2015;28(4):468-479. https://doi.org/10.1038/modpathol.2014.107

28Musholt TJ, Staubitz JI, Cámara RJ, et al. Detection of RET rearrangements in papillary thyroid carcinoma using RT-PCR and FISH techniques - a molecular and clinical analysis. Eur J Surg Oncol. 2019;45(6):1018-1024. https://doi.org/10.1016/j.ejso.2018.11.009

29Tsuta K, Kohno T, Yoshida A, et al. RET-rearranged non-small-cell lung carcinoma: a clinicopathological and molecular analysis. Br J Cancer. 2014;110(6):1571-1578. https://doi.org/10.1038/bjc.2014.36

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32Rebelo S, Domingues R, Catarino AL, et al. Immunostaining and RT-PCR: different approaches to search for RET rearrangements in patients with papillary thyroid carcinoma. Int J Oncol. 2003;23(4)1025-1032. https://doi.org/10.3892/ijo.23.4.1025

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34Belli C, Penault-Llorca F, Ladanyi M, et al. ESMO recommendations on the standard methods to detect RET fusions and mutations in daily practice and clinical research. Ann Oncol. 2021;32(3):337-350. https://doi.org/10.1016/j.annonc.2020.11.021

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Datum der letzten Prüfung: 29. August 2023

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