Cómo usar este buscador:
• Utilice como mínimo dos palabras para buscar y evite escribir preguntas o frases
• Escriba términos específicos en español
Solo obtendrá resultados sobre el producto seleccionado. Se ignoran las preposiciones, artículos etc.
Retsevmo (selpercatinib)
La siguiente información se proporciona en respuesta a su consulta y no está destinada a la promoción del medicamento.
Métodos de prueba para diagnosticar las alteraciones de RET para el tratamiento con Retsevmo® (selpercatinib)
Existen varios métodos recomendados para la detección de RET. Las directrices para la prueba de RET varían según el tipo de tumor.
Tumores con alteración del gen RET
“Tumores con alteración del gen RET” es un término amplio que abarca dos conjuntos de cambios genéticos: las fusiones del gen RET y las mutaciones del gen RET.1,2
Estas alteraciones activan posteriores vías de señalización de RET que promueven la proliferación y la supervivencia celular en el cáncer.1
Pruebas moleculares en tumores
Las pruebas genómicas tempranas se han asociado con mejores resultados para los pacientes, incluida una mejor supervivencia global.3-5 Por el contrario, las pruebas de un solo gen pueden tener un impacto negativo en las futuras pruebas genéticas integrales debido a la disponibilidad limitada de tejidos y a la gama de mutaciones que no se evaluaron inicialmente.5
Las pruebas moleculares en tumores se realizan para:
- facilitar un diagnóstico identificando las características tumorales;
- identificar los biomarcadores predictivos y de pronóstico que se pueden usar a la hora de analizar los posibles resultados clínicos;
- identificar a los pacientes adecuados para los ensayos clínicos; e
- identificar las terapias sistémicas o dirigidas apropiadas.6
Las pruebas moleculares también pueden identificar alteraciones genómicas procesables, definidas como alteraciones genómicas a las que se dirige directa o indirectamente un producto actual o en investigación.7
La secuenciación masiva (Next-Generation Testing, NGT) es un método de prueba amplio y completo que analiza el ADN o el ARN para detectar el gen RET.8 Este método permite realizar pruebas multiplex en una pequeña cantidad de tejido y detectar biomarcadores frecuentes e infrecuentes relacionados con el cáncer.9 La plataforma de NGS:
- permite una detección precisa y sensible de las fusiones, mutaciones y amplificaciones de los genes;
- permite la identificación potencial de las fusiones del gen RET como eventos dentro del marco; y
- permite la detección de agentes anteriores y alteraciones genómicas concurrentes que afecten a genes distintos del gen RET.1,8-10
La secuenciación masiva es adecuada para analizar las muestras fijadas con formalina y embebidas en parafina, y se puede adaptar para las muestras de biopsia líquida.8
Aunque las pruebas de tejido son más invasivas para el paciente, resultan preferibles porque:
El método de prueba molecular más apropiado depende del tipo de alteración. Se proporciona una descripción general de los métodos de prueba recomendados en la .
Método de pruebaa |
Descripción |
Ventaja |
Desventaja |
Apropiado para pruebas del gen RET |
Tiempo necesario para completar la prueba |
|
|
|
Sí |
2-4 semanas |
|
|
Identificación e información de la mutación del gen RET |
Cobertura deficiente de algunas secuencias intrónicas |
Sí |
||
|
Información no sesgada de la fusión; sin problemas de cobertura de intrones |
Afectado por la calidad del ARN |
Sí |
||
Utiliza ARN extraído de tejido para producir ADNc y usa sondas separadas para cada agente de 5' |
|
Las PCR están diseñadas para las fusiones predominantes, y la frecuencia real de las fusiones del gen RET se subestima |
Sí |
1-2 días |
|
Localiza las posiciones de secuencias de ADN específicas en los cromosomas |
Estándar muy sensible y definitivo para detectar un reordenamiento del gen RET, independientemente del agente de fusión |
|
Circunstancias infrecuentes |
2-3 días |
|
Utiliza anticuerpos para encontrar antígenos tisulares que se expresan con ciertos tipos de cáncer |
Ampliamente disponible |
|
No |
2 días |
Abreviaturas: ADNc = ácido desoxirribonucleico complementario; FISH = hibridación fluorescente in situ; FN = falso negativo; FP = falso positivo; IHC = inmunohistoquímica; NGS = secuenciación masiva; PCR = reacción de polimerasa en cadena; RET = reordenamiento durante la transfección; RT = transcriptasa inversa.
aEn orden descendente de aceptabilidad.
Directrices clínicas de pruebas
De acuerdo con una guía publicada recientemente por la Sociedad Europea de Oncología Médica (ESMO), los pacientes afectados por cáncer de pulmón de células no microcíticas (CPCNM), cáncer de tiroides no medular (CMT) u otros tumores sólidos, con espécimen disponible fijado en formol e incluido en parafina (FFPE) deben someterse a pruebas de detección para detectar la fusión de RET. Si la NGS no está disponible, se indica la hibridación fluorescente in situ (FISH) o la reacción en cadena de la polimerasa con transcriptasa inversa (RT-PCR) en CPNM y no MTC, según la disponibilidad local, el costo o la cantidad de células tumorales.34
Cáncer de pulmón no microcítico
- El Grupo de Trabajo de Medicina de Precisión de la ESMO recomienda que se realice un perfil de una muestra tumoral (o plasma) de un paciente con CPNM no escamoso avanzado mediante tecnología NGS, con el fin de detectar alteraciones de nivel 1. Teniendo en cuenta la alta frecuencia de fusiones, las opciones preferidas son las NGS basadas en ARN o las NGS basadas en ADN diseñadas para capturar dichas fusiones.35
En general, la Asociación Internacional para el Estudio del Cáncer de Pulmón (IASLC), el College of American Pathologists (CAP) y la Asociación de Patología Molecular (AMP) recomiendan que los pacientes con adenocarcinoma se sometan a pruebas de detección de variantes del receptor del factor de crecimiento epidérmico (EGFR), quinasa de linfoma anaplásico (ALK) y variantes ROS1. También se recomienda que fibrosarcomas de aceleración rápida B (BRAF) se incluyan en un panel más amplio.20,21
Se proporciona una descripción general de las directrices clínicas de pruebas del gen RET en cáncer de pulmón en la .
|
ESMO37 |
||
Pruebas del gen RET |
Recomendación de la categoría 2A como parte del cribado rutinario de biomarcadores.bc |
Considerar pruebas No recomendado como ensayo rutinario independiente
|
Las fusiones RET se consideran alteraciones de nivel 1C y se recomienda el cribado de alteraciones de nivel 1. |
Otras recomendaciones |
La metodología basada en NGS tiene una alta especificidad, y la NGS basada en ARN es preferible a la NGS basada en ADN para la detección de fusión. La FISH y la RT-PCR también se pueden utilizar para detectar reordenamientos de RET.b |
Preferencia de los paneles multiplex/NGS amplios respecto a las pruebas de un solo gen para identificar una gama más amplia de alteraciones procesables |
Teniendo en cuenta la alta frecuencia de fusiones, las opciones preferidas son las NGS basadas en ARN o las NGS basadas en ADN diseñadas para capturar dichas fusiones. |
Abreviaturas: ALK = quinasa de linfoma anaplásico; AMP = Asociación de Patología Molecular; CAP = College of American Pathologists; EGFR = receptor del factor de crecimiento epidérmico; ESMO = Sociedad Europea de Oncología Médica; FISH = hibridación fluorescente in situ; IASLC = Asociación Internacional para el Estudio del Cáncer de Pulmón; NCCN = National Comprehensive Cancer Network; NGS = secuenciación masiva; RET = reordenamiento durante la transfección; RT-PCR = reacción en cadena de la polimerasa con transcriptasa inversa.
a La NCCN® no ofrece garantías de ningún tipo respecto a su contenido, uso o aplicación y rechaza toda responsabilidad por su aplicación o uso.
bLas directrices de la NCCN® para CPNM proporcionan recomendaciones de biomarcadores específicos que deben probarse y recomiendan técnicas de prueba, pero no respaldan ningún ensayo de biomarcadores específico disponible comercialmente.
cCategoría 2A: según evidencia de nivel inferior, existe un consenso uniforme en la NCCN respecto a lo adecuado de la intervención.
Cáncer de tiroides
El cáncer medular de tiroides (CMT) es un subconjunto de aproximadamente el 1% al 2% de todos los casos de cáncer de tiroides.38 Aproximadamente el 75% de los casos de CMT son esporádicos y el 25% son hereditarios.38 Las pruebas moleculares pueden clasificar el CMT somático como neoplasia endocrina múltiple (NEM) 2a (que incluye ácido linoleico conjugado asociado o enfermedad de Hirschsprung) o NEM2b. Las pautas varían según la clasificación del CMT somático.39
Las pruebas moleculares también pueden determinar la presencia de RET. La mayoría de los pacientes con NEM2A o NEM2B y CMT familiar tienen mutaciones de la línea germinal de RET y aproximadamente el 50 % de los pacientes con CMT esporádico tienen mutaciones somáticas de RET.39
Aproximadamente el 15 %-30 % de los nódulos tiroideos se clasifican como citológicamente indeterminados mediante aspiración con aguja fina (AAF) en el momento del diagnóstico. Se han desarrollado pruebas moleculares para ayudar en el diagnóstico y la gestión adecuada de estas lesiones y para:
- evitar cirugías innecesarias para nódulos tiroideos benignos;
- identificar tumores de alto riesgo para una posible tiroidectomía total; e
- identificar nódulos premalignos con riesgo de bajo a intermedio de posible lobectomía.40
Se proporciona una descripción general de las directrices de pruebas del gen RET en cáncer de tiroides en la .
|
ATA41 |
ATA39 |
||
Pruebas del gen RET |
Debe considerarse la posibilidad de realizar pruebas en citología sospechosa con un panel de mutación de 7 genes |
Prueba en:
|
Examinar el tejido de la AAF en busca de alteraciones moleculares específicamente asociadas con neoplasias malignas, como mutaciones en BRAF, fusiones de RET y otras alteraciones genéticas nuevas. |
Prueba en:
|
Otras recomendaciones |
Después de considerar las características clínicas y ecográficas, se puede considerar la realización de pruebas mutacionales, incluida la RET, en nódulos con citología SUSP si se espera que dichos datos alteren la toma de decisiones quirúrgicas. |
A los padres que no quieran realizar pruebas del gen RET prenatales se les debe ofrecer asesoramiento genético |
En caso de ausencia de mutaciones en RET de la línea germinal, si el paciente con CMT se vuelve metastásico, se debe realizar un análisis de Q-PCR o NGS en muestras de tejido FFPE del sitio metastásico de la enfermedad para confirmar o rechazar la presencia de mutación RET. |
Debe considerarse la posibilidad de realizar pruebas en muestras de AAF que son indeterminadas |
Abreviaturas: ATA = Asociación Americana de Tiroides; BRAF = fibrosarcoma B acelerado rápidamente; CLA = ácido linoleico conjugado; ESMO = Sociedad Europea de Oncología Médica; FFPE = fijada en formol y embebida en parafina; AAF = aspiración con aguja fina; HD = enfermedad de Hirschsprung; NEM = neoplasia endocrina múltiple; MTC = carcinoma medular de tiroides; NCCN = Red Nacional Integral del Cáncer; NGS = secuenciación de nueva generación; Q-PCR = reacción en cadena de la polimerasa cuantitativa en tiempo real; YRA = yodo radiactivo; RET = reordenado durante la transfección; SUSP = sospechoso de malignidad; WT = tipo salvaje.
aLos marcadores moleculares deben interpretarse con precaución y en el contexto de las características clínicas, radiológicas y citológicas de cada paciente.
bLa NCCN® no ofrece garantías de ningún tipo respecto a su contenido, uso o aplicación y rechaza toda responsabilidad por su aplicación o uso.
cSe deben realizar pruebas de mutación específicas y asesoramiento genético en los miembros de la familia.
Referencias
1Drilon A, Hu ZI, Lai GGY, Tan DSW. Targeting RET-driven cancers: lessons from evolving preclinical and clinical landscapes. Nat Rev Clin Oncol. 2018;15(3):151-167. https://doi.org/10.1038/nrclinonc.2017.175
2Mulligan LM. RET revisited: expanding the oncogenic portfolio. Nat Rev Cancer. 2014;14(3):173-186. https://doi.org/10.1038/nrc3680
3Scott JA, Katzen HI, Lennerz JK, et al. Real world testing and treatment patterns among patients with stage IV NSCLC: a retrospective observational study. J Clin Oncol.2023;41(16_suppl):9030-9030. https://ascopubs.org/doi/abs/10.1200/JCO.2023.41.16_suppl.9030?afgooR
4Levy BP, Nguyen D, ShihY-H, et al. Association between real-world, upfront next generation sequencing and overall survival (OS) in advanced non-small cell lung cancer (aNSCLC). J Clin Oncol.2023;41(16_suppl):9117-9117. https://ascopubs.org/doi/abs/10.1200/JCO.2023.41.16_suppl.9117
5Nesline MK, DePietro P, Cooper M, et al. The impact of single gene testing (SGT) on subsequent comprehensive genomic profiling (CGP) success in community oncology practice for advanced non-small cell lung cancer (NSCLC). J Clin Oncol.2023;41(16_suppl):6506-6506. https://ascopubs.org/doi/abs/10.1200/JCO.2023.41.16_suppl.6506
6Normanno N, Denis MG, Thress KS, et al. Guide to detecting epidermal growth factor receptor (EGFR) mutations in ctDNA of patients with advanced non-small-cell lung cancer. Oncotarget. 2017;8(7):12501-12516. https://doi.org/10.18632/oncotarget.13915
7Meric-Bernstam F, Johnson A, Holla V, et al. A decision support framework for genomically informed investigational cancer therapy. JNCI. 2015;107(7). https://doi.org/10.1093/jnci/djv098
8Garinet S, Laurent-Puig P, Blons H, Oudart JB. Current and future molecular testing in NSCLC, what can we expect from new sequencing technologies? J Clin Med. 2018;7(6):144. https://doi.org/10.3390/jcm7060144
9Drilon A, Wang L, Arcila ME, et al. Broad, hybrid capture-based next-generation sequencing identifies actionable genomic alterations in lung adenocarcinomas otherwise negative for such alterations by other genomic testing approaches. Clin Cancer Res. 2015;21(16):3631-3639. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-14-2683
10Ferrara R, Auger N, Auclin E, Besse B. Clinical and translational implications of RET rearrangements in non–small cell lung cancer. J Thorac Oncol. 2018;13(1):27-45. https://doi.org/10.1016/j.jtho.2017.10.021
11Hou H, Yang X, Zhang J, et al. Discovery of targetable genetic alterations in advanced non-small cell lung cancer using a next-generation sequencing-based circulating tumor DNA assay. Sci Rep. 2017;7(1):14605. https://doi.org/10.1038/s41598-017-14962-0
12Villaflor V, Won B, Nagy R, et al. Biopsy-free circulating tumor DNA assay identifies actionable mutations in lung cancer. Oncotarget. 2016;7(41):66880-66891. https://doi.org/10.18632/oncotarget.11801
13Khoo C, Rogers TM, Fellowes A, et al. Molecular methods for somatic mutation testing in lung adenocarcinoma: EGFR and beyond. Transl Lung Cancer Res. 2015;4(2):126-141. https://doi.org/10.3978/j.issn.2218-6751.2015.01.10
14Vnencak-Jones CL, Berger MF, Pao W. Types of molecular tumor testing. My Cancer Genome. 2020. Updated February 3, 2020. Accessed February 12, 2020. https://www.mycancergenome.org/content/molecular-medicine/types-of-molecular-tumor-testing/
15Yu Y, Dong L, Li D, et al. Targeted DNA sequencing detects mutations related to susceptibility among familial non-medullary thyroid cancer. Sci Rep. 2015;5(1):16129. https://doi.org/10.1038/srep16129
16Davies KD, Le AT, Sheren J, et al. Comparison of molecular testing modalities for detection of ROS1 rearrangements in a cohort of positive patient samples. J Thorac Oncol. 2018;13(10):1474-1482. https://doi.org/10.1016/j.jtho.2018.05.041
17Lih CJ, Harrington RD, Sims DJ, et al. Analytical validation of the next-generation sequencing assay for a nationwide signal-finding clinical trial: molecular analysis for therapy choice clinical trial. J Mol Diagn. 2017;19(2):313-327. https://doi.org/10.1016/j.jmoldx.2016.10.007
18Vaughn CP, Costa JL, Feilotter HE, et al. Simultaneous detection of lung fusions using a multiplex RT-PCR next generation sequencing-based approach: a multi-institutional research study. BMC Cancer. 2018;18(1):828. https://doi.org/10.1186/s12885-018-4736-4
19Yang SR, Aypar U, Rosen EY, et al. Performance comparison of commonly used assays to detect RET fusions. Clin Cancer Res. 2020;27(5):1316-1328. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-20-3208
20Lindeman NI, Cagle PT, Aisner DL, et al. Updated molecular testing guideline for the selection of lung cancer patients for treatment with targeted tyrosine kinase inhibitors: guideline from the College of American Pathologists, the International Association for the Study of Lung Cancer, and the Association for Molecular Pathology. J Thorac Oncol. 2018;13(3):323-358. https://doi.org/10.1016/j.jtho.2017.12.001
21Lindeman NI, Cagle PT, Aisner DL, et al. Updated molecular testing guideline for the selection of lung cancer patients for treatment with targeted tyrosine kinase inhibitors: guideline from the College of American Pathologists, the International Association for the Study of Lung Cancer, and the Association for Molecular Pathology. Arch Pathol Lab Med. 2018;142(3):321-346. https://doi.org/10.5858/arpa.2017-0388-CP
22Zhang T, Lu Y, Ye Q, et al. An evaluation and recommendation of the optimal methodologies to detect RET gene rearrangements in papillary thyroid carcinoma. Genes Chromosomes Cancer. 2015;54(3):168-176. https://doi.org/10.1002/gcc.22229
23Caria P, Dettori T, Frau DV, et al. Assessing RET/PTC in thyroid nodule fine-needle aspirates: the FISH point of view. Endocr Relat Cancer. 2013;20(4):527-536. https://doi.org/10.1530/ERC-13-0157
24Colato C, Vicentini C, Cantara S, et al. Break-apart interphase fluorescence in situ hybridization assay in papillary thyroid carcinoma: on the road to optimizing the cut-off level for RET/PTC rearrangements. Eur J Endocrinol. 2015;172(5):571-582. https://doi.org/10.1530/EJE-14-0930
25Chen F, Clark DP, Hawkins AL, et al. A break-apart fluorescence in situ hybridization assay for detecting RET translocations in papillary thyroid carcinoma. Cancer Genet Cytogenet. 2007;178(2):128-134. https://doi.org/10.1016/j.cancergencyto.2007.07.006
26Go H, Jung YJ, Kang HW, et al. Diagnostic method for the detection of KIF5B-RET transformation in lung adenocarcinoma. Lung Cancer. 2013;82(1):44-50. https://doi.org/10.1016/j.lungcan.2013.07.009
27Lee SE, Lee B, Hong M, et al. Comprehensive analysis of RET and ROS1 rearrangement in lung adenocarcinoma. Mod Pathol. 2015;28(4):468-479. https://doi.org/10.1038/modpathol.2014.107
28Musholt TJ, Staubitz JI, Cámara RJ, et al. Detection of RET rearrangements in papillary thyroid carcinoma using RT-PCR and FISH techniques - a molecular and clinical analysis. Eur J Surg Oncol. 2019;45(6):1018-1024. https://doi.org/10.1016/j.ejso.2018.11.009
29Tsuta K, Kohno T, Yoshida A, et al. RET-rearranged non-small-cell lung carcinoma: a clinicopathological and molecular analysis. Br J Cancer. 2014;110(6):1571-1578. https://doi.org/10.1038/bjc.2014.36
30Radonic T, Geurts-Giele WRR, Samsom KG, et al. RET FISH analysis is a sensitive but highly unspecific screening method for RET fusions in lung cancer. J Thorac Oncol. Published online February 12, 2021. https://doi.org/10.1016/j.jtho.2021.01.1619
31Cerilli LA, Mills SE, Rumpel CA, et al. Interpretation of RET immunostaining in follicular lesions of the thyroid. Am J Clin Pathol. 2002;118(2):186-193. https://doi.org/10.1309/53UC-4U88-RRTN-H33G
32Rebelo S, Domingues R, Catarino AL, et al. Immunostaining and RT-PCR: different approaches to search for RET rearrangements in patients with papillary thyroid carcinoma. Int J Oncol. 2003;23(4)1025-1032. https://doi.org/10.3892/ijo.23.4.1025
33Kim SW, Roh J, Park CS. Immunohistochemistry for pathologists: protocols, pitfalls, and tips. J Pathol Transl Med. 2016;50(6):411-418. https://doi.org/10.4132/jptm.2016.08.08
34Belli C, Penault-Llorca F, Ladanyi M, et al. ESMO recommendations on the standard methods to detect RET fusions and mutations in daily practice and clinical research. Ann Oncol. 2021;32(3):337-350. https://doi.org/10.1016/j.annonc.2020.11.021
35Mosele F, Remon J, Mateo J. Recommendations for the use of next-generation sequencing (NGS) for patients with metastatic cancers: a report from the ESMO Precision Medicine Working Group. Ann Oncol. 2020;31(11):1491-1505. https://doi.org/10.1016/j.annonc.2020.07.014
36Referenced with permission from the NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology (NCCN Guidelines®) for Non-Small Cell Lung Cancer V.8.2020. © National Comprehensive Cancer Network, Inc. 2020. All rights reserved. Accessed September 15, 2020. To view the most recent and complete version of the guideline, go online to NCCN.org.
37Planchard D, Popat S, Kerr K, et al; ESMO Guidelines Committee. Metastatic non-small cell lung cancer: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Ann Oncol. 2018;29(suppl 4):iv192-iv237. http://dx.doi.org/10.1093/annonc/mdy275
38Medullary thyroid cancer. American Thyroid Association. Accessed February 12, 2020. https://www.thyroid.org/medullary-thyroid-cancer/
39Wells SA Jr., Asa SL, Dralle H, et al. Revised American Thyroid Association guidelines for the management of medullary thyroid carcinoma. Thyroid. 2015;25(6):567-610. http://dx.doi.org/10.1089/thy.2014.0335
40Nishino M, Nikiforova M. Update on molecular testing for cytologically indeterminate thyroid nodules Arch Pathol Lab Med. 2018;142(4):446-457. https://doi.org/10.5858/arpa.2017-0174-RA
41Haugen BR, Alexander EK, Bible KC, et al. 2015 American Thyroid Association management guidelines for adult patients with thyroid nodules and differentiated thyroid cancer: the American Thyroid Association Guidelines Task Force on thyroid nodules and differentiated thyroid cancer. Thyroid. 2016;26(1):1-33. https://doi.org/10.1089/thy.2015.0020
42Filetti S, Durante C, Hartl D, et al. Thyroid cancer: ESMO clinical practice guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Ann Oncol. 2019;30(12):1856-1883. https://doi.org/10.1093/annonc/mdz400
43Referenced with permission from the NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology (NCCN Guidelines®) for Guideline for Thyroid Carcinoma V.1.2020. © National Comprehensive Cancer Network, Inc 2020. Accessed June 19, 2020. To view the most recent and complete version of the guideline, go online to NCCN.org.
Fecha de la última revisión: 29 de agosto de 2023