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Retsevmo (selpercatinib)

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La siguiente información se proporciona en respuesta a su consulta y no está destinada a la promoción del medicamento.

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¿Qué métodos diagnósticos se utilizan para detectar alteraciones en el gen RET?

Existen diversas técnicas recomendadas para detectar alteraciones de RET. Las recomendaciones para su estudio varían según el tipo de tumor, ya sea tiroideo o pulmonar.

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Resumen del contenido

  • Tumores con alteración del gen RET 
  • Pruebas moleculares en tumores
  • Directrices clínicas de pruebas
    • Cáncer de pulmón no microcítico
    • Cáncer de tiroides
  • Referencias

Tumores con alteración del gen RET 

“Tumores con alteración del gen RET” es un término amplio que abarca dos conjuntos de cambios genéticos: las fusiones del gen RET y las mutaciones del gen RET.1,2

Estas alteraciones activan posteriores vías de señalización de RET que promueven la proliferación y la supervivencia celular en el cáncer.1

Pruebas moleculares en tumores

Las pruebas genómicas tempranas se han asociado con mejores resultados para los pacientes, incluida una mejor supervivencia global.3-5 Por el contrario, las pruebas de un solo gen pueden tener un impacto negativo en las futuras pruebas genéticas integrales debido a la disponibilidad limitada de tejidos y a la gama de mutaciones que no se evaluaron inicialmente.5

Las pruebas moleculares en tumores se realizan para:

  • facilitar un diagnóstico identificando las características tumorales;
  • identificar los biomarcadores predictivos y de pronóstico que se pueden usar a la hora de analizar los posibles resultados clínicos;
  • identificar a los pacientes adecuados para los ensayos clínicos; e
  • identificar las terapias sistémicas o dirigidas apropiadas.6

Las pruebas moleculares también pueden identificar alteraciones genómicas procesables, definidas como alteraciones genómicas a las que se dirige directa o indirectamente un producto actual o en investigación.7

La secuenciación masiva (Next-Generation Testing, NGT) es un método de prueba amplio y completo que analiza el ADN o el ARN para detectar el gen RET.8 Este método permite realizar pruebas multiplex en una pequeña cantidad de tejido y detectar biomarcadores frecuentes e infrecuentes relacionados con el cáncer.9 La plataforma de NGS:

  • permite una detección precisa y sensible de las fusiones, mutaciones y amplificaciones de los genes;
  • permite la identificación potencial de las fusiones del gen RET como eventos dentro del marco; y
  • permite la detección de agentes anteriores y alteraciones genómicas concurrentes que afecten a genes distintos del gen RET.1,8-10

La secuenciación masiva es adecuada para analizar las muestras fijadas con formalina y embebidas en parafina, y se puede adaptar para las muestras de biopsia líquida.8

Aunque las pruebas de tejido son más invasivas para el paciente, resultan preferibles porque:

  • es posible que una alteración del gen RET que se encuentre en una biopsia no se encuentre en la sangre a través de una biopsia líquida; y
  • hasta un 30 % de las alteraciones del gen RET pueden no detectarse si solo se analiza el ADN tumoral circulante (ADNtc).11,12

Además de la NGS, se utilizan varios métodos para el diagnóstico de las mutaciones de RET. La Métodos de análisis de RET ofrece una visión general de los métodos de análisis de RET, enumerados en orden decreciente de aceptabilidad.

Métodos de análisis de RET

Método de análisisa

Descripción

Ventajas

Inconvenientes

Adecuado para el análisis de RET

Tiempo necesario para completar la prueba

NGS1,9,13,14

  • Permite realizar análisis multiplex con una pequeña cantidad de tejido
  • Detecta biomarcadores relacionados con el cáncer, tanto frecuentes como poco frecuentes
  • Muy sensible y específica
  • Interrogación simultánea de dianas potencialmente accionables
  • Detecta fusiones conocidas y novedosas
  • Ausencia de un modelo o directrices estandarizados sobre la NGS en la práctica clínica
  • Puede identificar variantes de baja frecuencia cuya interpretación clínica se desconoce

Sí

2-4 semanas

NGS basada en ADN9,15-17

 

Identificación de RET/información sobre mutaciones

Cobertura deficiente de algunas regiones intrónicas

Sí

 

NGS basada en ARN8,9,18,19

 

Información no sesgada sobre fusiones; sin problemas de cobertura de intrones

Se ve afectada por la calidad del ARN

Sí

 

RT-PCR10,14,20-24

Utiliza ARN del tejido para generar ADNc y emplea sondas separadas para cada compañero 5'

  • Rápida
  • Relativamente económica
  • Específica para identificar compañeros de fusión de RET conocidos y no detecta reordenamientos novedosos de RET
  • Los cebadores necesarios para la PCR están diseñados para las fusiones más frecuentes
  • Es posible que no se detecten las fusiones poco frecuentes, por lo que la PCR puede dar lugar a algunos resultados falsos negativos

Sí

1-2 días

FISH8,10,14,25-30

Localiza las posiciones de secuencias específicas de ADN en los cromosomas

Muy sensible; estándar definitivo para detectar reordenamientos de RET, con independencia del compañero de fusión

  • Es necesario definir y validar los puntos de corte para garantizar una especificidad adecuada
  • Elevada tasa de FP
  • No permite detectar información sobre mutaciones

Sí

2-3 días

IHC8,10,31-33

Utiliza anticuerpos para detectar antígenos tisulares que se expresan en determinados tipos de cáncer

Ampliamente disponible

  • Poco fiable para detectar reordenamientos de RET
  • Baja sensibilidad
  • Especificidad variable
  • FP/FN significativos

No

2 días

Abreviaturas: ADN = ácido desoxirribonucleico; ADNc = ácido desoxirribonucleico complementario; ARN = ácido ribonucleico; FISH = hibridación in situ con fluorescencia (fluorescence in situ hybridization); FN = falso negativo; FP = falso positivo; IHC = inmunohistoquímica (immunohistochemistry); NGS = secuenciación de nueva generación (next-generation sequencing); PCR = reacción en cadena de la polimerasa (polymerase chain reaction); RET = reorganizado durante la transfección (rearranged during transfection); RT = transcripción inversa (reverse transcription).

aEnumerados en orden decreciente de aceptabilidad.

Directrices clínicas de pruebas

De acuerdo con una guía publicada recientemente por la Sociedad Europea de Oncología Médica (ESMO), los pacientes afectados por cáncer de pulmón de células no microcíticas (CPCNM), cáncer de tiroides no medular (CMT) u otros tumores sólidos, con espécimen disponible fijado en formol e incluido en parafina (FFPE) deben someterse a pruebas de detección para detectar la fusión de RET. Si la NGS no está disponible, se indica la hibridación fluorescente in situ (FISH) o la reacción en cadena de la polimerasa con transcriptasa inversa (RT-PCR) en CPNM y no MTC, según la disponibilidad local, el costo o la cantidad de células tumorales.34

Cáncer de pulmón no microcítico

El Grupo de Trabajo de Medicina de Precisión de la ESMO recomienda que las muestras tumorales (o plasmáticas) de los pacientes con CPNM no escamoso avanzado se caractericen mediante tecnología de NGS, con el fin de detectar alteraciones de nivel 1. No obstante, dado que continúan identificándose nuevas alteraciones genómicas clasificadas como nivel I según la Escala ESMO de Accionabilidad Clínica de Dianas moleculares (ESMO Scale for Clinical Actionability of molecular Targets, ESCAT), resulta esencial definir el enfoque óptimo para implementar la NGS tumoral en el manejo clínico del CPNM no escamoso avanzado.35

En general,  la Asociación Internacional para el Estudio del Cáncer de Pulmón (IASLC), el College of American Pathologists (CAP) y la Asociación de Patología Molecular (AMP) recomiendan que los pacientes con adenocarcinoma se sometan a pruebas de detección de variantes del receptor del factor de crecimiento epidérmico (EGFR), quinasa de linfoma anaplásico  (ALK) y variantes ROS1. También se recomienda que fibrosarcomas de aceleración rápida B (BRAF) se incluyan en un panel más amplio.20,21

Se proporciona una descripción general de las directrices clínicas de pruebas del gen RET en cáncer de pulmón en la Directrices clínicas para el análisis de RET en el cáncer de pulmón.


Directrices clínicas para el análisis de RET en el cáncer de pulmón

 

IASLC/CAP/AMP20,21

ESMO35

NCCN®36,a

Análisis de RET

Considerar la realización del análisis.

 No se recomienda como prueba independiente de rutina, pero es adecuada como parte de un panel más amplio, ya sea de forma inicial o si el resultado es negativo para EGFR, ALK y ROS1.

Las fusiones de RET se han reclasificado del nivel 1C al 1A, de acuerdo con la ESCAT.

Recomendación de categoría 2A para la realización del análisis como parte de una caracterización molecular amplia.b,c

Otras recomendaciones

Se prefieren los paneles amplios multiplex/NGS frente al análisis de un solo gen, con el fin de identificar un abanico más amplio de alteraciones accionables.

Dado que continúan identificándose nuevas alteraciones genómicas clasificadas como nivel I según la Escala ESMO de Accionabilidad Clínica de Dianas moleculares (ESMO Scale for Clinical Actionability of molecular Targets, ESCAT), resulta esencial definir el enfoque óptimo para implementar la NGS tumoral en el manejo clínico del CPNM no escamoso avanzado.

La metodología basada en NGS presenta una elevada especificidad, y la NGS basada en ARN es preferible a la NGS basada en ADN para la detección de fusiones. La FISH y la RT-PCR también pueden utilizarse para detectar reordenamientos de RET.b

Abreviaturas: ADN = ácido desoxirribonucleico; ALK = cinasa del linfoma anaplásico (anaplastic lymphoma kinase); AMP = Asociación de Patología Molecular (Association for Molecular Pathology); ARN = ácido ribonucleico; CAP = Colegio de Patólogos Americanos (College of American Pathologists); CPNM = cáncer de pulmón no microcítico; EGFR = receptor del factor de crecimiento epidérmico (epidermal growth factor receptor); ESCAT = Escala ESMO de Accionabilidad Clínica de Dianas moleculares (ESMO Scale for Clinical Actionability of molecular Targets); ESMO = Sociedad Europea de Oncología Médica (European Society for Medical Oncology); FISH = hibridación in situ con fluorescencia (fluorescence in situ hybridization); IASLC = Asociación Internacional para el Estudio del Cáncer de Pulmón (International Association for the Study of Lung Cancer); NCCN = Red Nacional Integral del Cáncer (National Comprehensive Cancer Network); NGS = secuenciación de nueva generación (next-generation sequencing); RET = reorganizado durante la transfección (rearranged during transfection); RT-PCR = reacción en cadena de la polimerasa con transcripción inversa (reverse-transcription polymerase chain reaction).

aLa NCCN® no otorga garantía alguna de ningún tipo con respecto a su contenido, uso o aplicación, y declina toda responsabilidad por su aplicación o uso en cualquier forma.

bLas Guías NCCN® para el CPNM ofrecen recomendaciones sobre los biomarcadores individuales que deben analizarse y sobre las técnicas de análisis recomendadas, pero no respaldan ninguna prueba comercial específica de biomarcadores.

cCategoría 2A: con base en evidencia de menor nivel, existe consenso uniforme de la NCCN en que la intervención es adecuada.

Cáncer de tiroides

El cáncer medular de tiroides (CMT) es un subconjunto de aproximadamente el 1% al 2% de todos los casos de cáncer de tiroides.37 Aproximadamente el 75% de los casos de CMT son esporádicos y el 25% son hereditarios.37 Las pruebas moleculares pueden clasificar el CMT somático como neoplasia endocrina múltiple (NEM) 2a (que incluye ácido linoleico conjugado asociado o enfermedad de Hirschsprung) o NEM2b. Las pautas varían según la clasificación del CMT somático.38

Las pruebas moleculares también pueden determinar la presencia de RET. La mayoría de los pacientes con NEM2A o NEM2B y CMT familiar tienen mutaciones de la línea germinal de RET y aproximadamente el 50 % de los pacientes con CMT esporádico tienen mutaciones somáticas de RET.38

Aproximadamente el 15 %-30 % de los nódulos tiroideos se clasifican como citológicamente indeterminados mediante aspiración con aguja fina (AAF) en el momento del diagnóstico. Se han desarrollado pruebas moleculares para ayudar en el diagnóstico y la gestión adecuada de estas lesiones y para:

  • evitar cirugías innecesarias para nódulos tiroideos benignos;
  • identificar tumores de alto riesgo para una posible tiroidectomía total; e
  • identificar nódulos premalignos con riesgo de bajo a intermedio de posible lobectomía.39

Se proporciona una descripción general de las directrices de pruebas del gen RET en cáncer de tiroides en la Directrices clínicas de pruebas del gen RET en cáncer de tiroides.

Directrices clínicas de pruebas del gen RET en cáncer de tiroides

 

ATA40
(en el momento del diagnóstico)

ATA38
(prueba somática del tumor para decisiones de pronóstico y tratamiento)

ESMO34,41

NCCN®ab42

Pruebas del gen RET

Debe considerarse la posibilidad de realizar pruebas en citología sospechosa con un panel de mutación de 7 genes

Prueba en:

  • CMT
  • CMT esporádico
  • familiares de primer grado de pacientes con CMT
  • pacientes con CLA
  • padres de lactantes con fenotipo clásico NEM2B
  • lactantes/niños con EH y mutaciones de la línea germinal del exón 10 del gen RET
  • adultos con mutaciones de NEM2A y del exón 10 con síntomas de EH

Examinar el tejido de la AAF en busca de alteraciones moleculares específicamente asociadas con neoplasias malignas, como mutaciones en BRAF, fusiones de RET y otras alteraciones genéticas nuevas.

Prueba en:

  • CMT en AAF o después de una cirugía de tiroides
  • enfermedad localmente recurrente avanzada o metastásica no susceptible de tratamiento con YRA
  • CMT esporádico de nuevo diagnóstico
  • WT de la línea germinal o desconocido con CMT recurrente o persistente
  • mutación de la línea germinalc
  • CMT NEM2A
  • CMT NEM2B
  • miembros de la familia

Otras recomendaciones

Después de considerar las características clínicas y ecográficas, se puede considerar la realización de pruebas mutacionales, incluida la RET, en nódulos con citología SUSP si se espera que dichos datos alteren la toma de decisiones quirúrgicas.

A los padres que no quieran realizar pruebas del gen RET prenatales se les debe ofrecer asesoramiento genético

En caso de ausencia de mutaciones en RET de la línea germinal, si el paciente con CMT se vuelve metastásico, se debe realizar un análisis de Q-PCR o NGS en muestras de tejido FFPE del sitio metastásico de la enfermedad para confirmar o rechazar la presencia de mutación RET.

Debe considerarse la posibilidad de realizar pruebas en muestras de AAF que son indeterminadas

Abreviaturas: ATA = Asociación Americana de Tiroides; BRAF = fibrosarcoma B acelerado rápidamente; CLA = ácido linoleico conjugado; ESMO = Sociedad Europea de Oncología Médica; FFPE = fijada en formol y embebida en parafina; AAF = aspiración con aguja fina; HD = enfermedad de Hirschsprung; NEM = neoplasia endocrina múltiple; MTC = carcinoma medular de tiroides; NCCN = Red Nacional Integral del Cáncer; NGS = secuenciación de nueva generación; Q-PCR = reacción en cadena de la polimerasa cuantitativa en tiempo real; YRA = yodo radiactivo; RET = reordenado durante la transfección; SUSP = sospechoso de malignidad; WT = tipo salvaje.

aLos marcadores moleculares deben interpretarse con precaución y en el contexto de las características clínicas, radiológicas y citológicas de cada paciente.

bLa NCCN® no ofrece garantías de ningún tipo respecto a su contenido, uso o aplicación y rechaza toda responsabilidad por su aplicación o uso.

cSe deben realizar pruebas de mutación específicas y asesoramiento genético en los miembros de la familia.

Referencias

1Drilon A, Hu ZI, Lai GGY, Tan DSW. Targeting RET-driven cancers: lessons from evolving preclinical and clinical landscapes. Nat Rev Clin Oncol. 2018;15(3):151-167. https://doi.org/10.1038/nrclinonc.2017.175

2Mulligan LM. RET revisited: expanding the oncogenic portfolio. Nat Rev Cancer. 2014;14(3):173-186. https://doi.org/10.1038/nrc3680

3Scott JA, Katzen HI, Lennerz JK, et al. Real world testing and treatment patterns among patients with stage IV NSCLC: a retrospective observational study. J Clin Oncol. 2023;41(16 suppl):9030-9030. https://doi.org/10.1200/JCO.2023.41.16_suppl.9030

4Levy BP, Nguyen D, Shih Y-H, et al. Association between real-world, upfront next generation sequencing and overall survival (OS) in advanced non-small cell lung cancer (aNSCLC). J Clin Oncol. 2023;41(16 suppl):9117-9117. https://doi.org/10.1200/JCO.2023.41.16_suppl.9117

5Nesline MK, DePietro P, Cooper M, et al. The impact of single gene testing (SGT) on subsequent comprehensive genomic profiling (CGP) success in community oncology practice for advanced non-small cell lung cancer (NSCLC). J Clin Oncol. 2023;41(16 suppl):6506-6506. https://doi.org/10.1200/JCO.2023.41.16_suppl.6506

6Normanno N, Denis MG, Thress KS, et al. Guide to detecting epidermal growth factor receptor (EGFR) mutations in ctDNA of patients with advanced non-small-cell lung cancer. Oncotarget. 2017;8(7):12501-12516. https://doi.org/10.18632/oncotarget.13915

7Meric-Bernstam F, Johnson A, Holla V, et al. A decision support framework for genomically informed investigational cancer therapy. JNCI. 2015;107(7). https://doi.org/10.1093/jnci/djv098

8Garinet S, Laurent-Puig P, Blons H, Oudart JB. Current and future molecular testing in NSCLC, what can we expect from new sequencing technologies? J Clin Med. 2018;7(6):144. https://doi.org/10.3390/jcm7060144

9Drilon A, Wang L, Arcila ME, et al. Broad, hybrid capture-based next-generation sequencing identifies actionable genomic alterations in lung adenocarcinomas otherwise negative for such alterations by other genomic testing approaches. Clin Cancer Res. 2015;21(16):3631-3639. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-14-2683

10Ferrara R, Auger N, Auclin E, Besse B. Clinical and translational implications of RET rearrangements in non–small cell lung cancer. J Thorac Oncol. 2018;13(1):27-45. https://doi.org/10.1016/j.jtho.2017.10.021

11Hou H, Yang X, Zhang J, et al. Discovery of targetable genetic alterations in advanced non-small cell lung cancer using a next-generation sequencing-based circulating tumor DNA assay. Sci Rep. 2017;7(1):14605. https://doi.org/10.1038/s41598-017-14962-0

12Villaflor V, Won B, Nagy R, et al. Biopsy-free circulating tumor DNA assay identifies actionable mutations in lung cancer. Oncotarget. 2016;7(41):66880-66891. https://doi.org/10.18632/oncotarget.11801

13Khoo C, Rogers TM, Fellowes A, et al. Molecular methods for somatic mutation testing in lung adenocarcinoma: EGFR and beyond. Transl Lung Cancer Res. 2015;4(2):126-141. https://doi.org/10.3978/j.issn.2218-6751.2015.01.10

14Vnencak-Jones CL, Berger MF, Pao W. Types of molecular tumor testing. My Cancer Genome. 2020. Updated February 3, 2020. Accessed February 12, 2020. https://www.mycancergenome.org/content/molecular-medicine/types-of-molecular-tumor-testing/

15Yu Y, Dong L, Li D, et al. Targeted DNA sequencing detects mutations related to susceptibility among familial non-medullary thyroid cancer. Sci Rep. 2015;5(1):16129. https://doi.org/10.1038/srep16129

16Davies KD, Le AT, Sheren J, et al. Comparison of molecular testing modalities for detection of ROS1 rearrangements in a cohort of positive patient samples. J Thorac Oncol. 2018;13(10):1474-1482. https://doi.org/10.1016/j.jtho.2018.05.041

17Lih CJ, Harrington RD, Sims DJ, et al. Analytical validation of the next-generation sequencing assay for a nationwide signal-finding clinical trial: molecular analysis for therapy choice clinical trial. J Mol Diagn. 2017;19(2):313-327. https://doi.org/10.1016/j.jmoldx.2016.10.007

18Vaughn CP, Costa JL, Feilotter HE, et al. Simultaneous detection of lung fusions using a multiplex RT-PCR next generation sequencing-based approach: a multi-institutional research study. BMC Cancer. 2018;18(1):828. https://doi.org/10.1186/s12885-018-4736-4

19Yang SR, Aypar U, Rosen EY, et al. Performance comparison of commonly used assays to detect RET fusions. Clin Cancer Res. 2020;27(5):1316-1328. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-20-3208

20Lindeman NI, Cagle PT, Aisner DL, et al. Updated molecular testing guideline for the selection of lung cancer patients for treatment with targeted tyrosine kinase inhibitors: guideline from the College of American Pathologists, the International Association for the Study of Lung Cancer, and the Association for Molecular Pathology. J Thorac Oncol. 2018;13(3):323-358. https://doi.org/10.1016/j.jtho.2017.12.001

21Lindeman NI, Cagle PT, Aisner DL, et al. Updated molecular testing guideline for the selection of lung cancer patients for treatment with targeted tyrosine kinase inhibitors: guideline from the College of American Pathologists, the International Association for the Study of Lung Cancer, and the Association for Molecular Pathology. Arch Pathol Lab Med. 2018;142(3):321-346. https://doi.org/10.5858/arpa.2017-0388-CP

22Zhang T, Lu Y, Ye Q, et al. An evaluation and recommendation of the optimal methodologies to detect RET gene rearrangements in papillary thyroid carcinoma. Genes Chromosomes Cancer. 2015;54(3):168-176. https://doi.org/10.1002/gcc.22229

23Caria P, Dettori T, Frau DV, et al. Assessing RET/PTC in thyroid nodule fine-needle aspirates: the FISH point of view. Endocr Relat Cancer. 2013;20(4):527-536. https://doi.org/10.1530/ERC-13-0157

24Colato C, Vicentini C, Cantara S, et al. Break-apart interphase fluorescence in situ hybridization assay in papillary thyroid carcinoma: on the road to optimizing the cut-off level for RET/PTC rearrangements. Eur J Endocrinol. 2015;172(5):571-582. https://doi.org/10.1530/EJE-14-0930

25Chen F, Clark DP, Hawkins AL, et al. A break-apart fluorescence in situ hybridization assay for detecting RET translocations in papillary thyroid carcinoma. Cancer Genet Cytogenet. 2007;178(2):128-134. https://doi.org/10.1016/j.cancergencyto.2007.07.006

26Go H, Jung YJ, Kang HW, et al. Diagnostic method for the detection of KIF5B-RET transformation in lung adenocarcinoma. Lung Cancer. 2013;82(1):44-50. https://doi.org/10.1016/j.lungcan.2013.07.009

27Lee SE, Lee B, Hong M, et al. Comprehensive analysis of RET and ROS1 rearrangement in lung adenocarcinoma. Mod Pathol. 2015;28(4):468-479. https://doi.org/10.1038/modpathol.2014.107

28Musholt TJ, Staubitz JI, Cámara RJ, et al. Detection of RET rearrangements in papillary thyroid carcinoma using RT-PCR and FISH techniques - a molecular and clinical analysis. Eur J Surg Oncol. 2019;45(6):1018-1024. https://doi.org/10.1016/j.ejso.2018.11.009

29Tsuta K, Kohno T, Yoshida A, et al. RET-rearranged non-small-cell lung carcinoma: a clinicopathological and molecular analysis. Br J Cancer. 2014;110(6):1571-1578. https://doi.org/10.1038/bjc.2014.36

30Radonic T, Geurts-Giele WRR, Samsom KG, et al. RET FISH analysis is a sensitive but highly unspecific screening method for RET fusions in lung cancer. J Thorac Oncol. Published online February 12, 2021. https://doi.org/10.1016/j.jtho.2021.01.1619

31Cerilli LA, Mills SE, Rumpel CA, et al. Interpretation of RET immunostaining in follicular lesions of the thyroid. Am J Clin Pathol. 2002;118(2):186-193. https://doi.org/10.1309/53UC-4U88-RRTN-H33G

32Rebelo S, Domingues R, Catarino AL, et al. Immunostaining and RT-PCR: different approaches to search for RET rearrangements in patients with papillary thyroid carcinoma. Int J Oncol. 2003;23(4):1025-1032. https://doi.org/10.3892/ijo.23.4.1025

33Kim SW, Roh J, Park CS. Immunohistochemistry for pathologists: protocols, pitfalls, and tips. J Pathol Transl Med. 2016;50(6):411-418. https://doi.org/10.4132/jptm.2016.08.08

34Belli C, Penault-Llorca F, Ladanyi M, et al. ESMO recommendations on the standard methods to detect RET fusions and mutations in daily practice and clinical research. Ann Oncol. 2021;32(3):337-350. https://doi.org/10.1016/j.annonc.2020.11.021

35Mosele MF, Westphalen CB, Stenzinger A, et al. Recommendations for the use of next-generation sequencing (NGS) for patients with advanced cancer in 2024: a report from the ESMO Precision Medicine Working Group. Ann Oncol. Published online May 27, 2024. https://doi.org/10.1016/j.annonc.2024.04.005

36Referenced with permission from the NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology (NCCN Guidelines®) for Non-Small Cell Lung Cancer V.2.2022. © National Comprehensive Cancer Network, Inc. 2022. All rights reserved. Accessed March 16, 2022. To view the most recent and complete version of the guideline, go online to NCCN.org

37Medullary thyroid cancer. American Thyroid Association. Accessed February 12, 2020. https://www.thyroid.org/medullary-thyroid-cancer/

38Wells SA Jr, Asa SL, Dralle H, et al. Revised American Thyroid Association guidelines for the management of medullary thyroid carcinoma. Thyroid. 2015;25(6):567-610. http://doi.org/10.1089/thy.2014.0335

39Nishino M, Nikiforova M. Update on molecular testing for cytologically indeterminate thyroid nodules. Arch Pathol Lab Med. 2018;142(4):446-457. https://doi.org/10.5858/arpa.2017-0174-RA

40Haugen BR, Alexander EK, Bible KC, et al. 2015 American Thyroid Association management guidelines for adult patients with thyroid nodules and differentiated thyroid cancer: the American Thyroid Association Guidelines Task Force on thyroid nodules and differentiated thyroid cancer. Thyroid. 2016;26(1):1-33. https://doi.org/10.1089/thy.2015.0020

41Filetti S, Durante C, Hartl D, et al. Thyroid cancer: ESMO clinical practice guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Ann Oncol. 2019;30(12):1856-1883. https://doi.org/10.1093/annonc/mdz400

42Referenced with permission from the NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology (NCCN Guidelines®) for Guideline for Thyroid Carcinoma V.1.2020. © National Comprehensive Cancer Network, Inc 2020. Accessed June 19, 2020. To view the most recent and complete version of the guideline, go online to NCCN.org.

Fecha de la última revisión: 20 de julio de 2026

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    4.0.0 | Fecha actualización: 9/2026 | MI-LM-ES-1028 | © Eli Lilly and Company 2026

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